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TRAP-銀染法端粒酶活性檢測試劑盒

發布時間:2021/11/10 9:12:31      閱讀次數:840

 TRAP-銀染法端粒酶活性檢測試劑盒

產品信息:Kim于1994年借助PCR技術建立了靈敏的端粒酶檢測方法——端粒重復片段擴增(telomerase repeat amplification protocol,TRAP)。本產品是在其方法的基礎上,進行適當改良,開發出來的研究用試劑盒。

本品與通常的端粒酶活性測定法相比較,具有以下特征:

1、內標與端粒酶提取液在同一管里進行PCR擴增,提高了檢測的準確性。

2、提供了陽性對照,可以更加準確地判定陽性實驗結果。

3、優化了引物設計,使PCR 效果進一步提高。

使用須知:本試劑盒為研究用試劑,不能將其作為診斷或臨床檢測試劑使用。

背景知識:端粒酶是合成染色體末端的端粒的酶。端粒(telomere)是真核細胞染色體的天然末端,由上千個6堿基重復序列(TTAGGG)組成,是細胞必需的遺傳組分,它的作用是維持端粒有足夠的長度,保證基因信息在復制過程中的準確性,以防止染色體末端遺傳信息的丟失。在正常情況下,每個細胞分裂周期都會使端粒變的越來越短,當端粒短到一定程度時就會發出信號,細胞停止分裂。

端粒酶由RNA和蛋白質亞基組成,是基本的核蛋白逆轉錄酶,在細胞染色體復制過程中,能夠以自身RNA為模板,在染色體3’末端合成重復序列,維持端粒的長度。端粒酶在正常體細胞中的活性被抑制,但是大量的資料表明在一些惡性腫瘤中的表達高達85%。

由于端粒酶特異地表達于各種腫瘤細胞,并且是大多數腫瘤細胞持續分裂所必需的。因此,端粒酶活性是診斷多數惡性腫瘤、判斷愈后的良好指標。

基本原理:利用端粒酶在體外可以以其自身RNA的模板區為模板,在適宜的寡核苷酸鏈的末端添加6個堿基的重復序列的特性,采用PCR方法擴增此重復序列,并進而用聚丙烯酰胺(PAGE)凝膠電泳顯示6個堿基差異的梯帶。1994年Kim建立的TRAP法,其主要原理如下:首先合成一個18nt的TS做上游引物,端粒酶結合TS末端的GTT并合成AGGGTTAG,然后每經過一次轉位合成一個ggttag的6堿基重復序列,端粒酶滅活后,加入CX做下游引物,經過多次變性-退火-延伸,擴增端粒酶延伸產物。
 TBD-PCR端粒酶活性檢測試劑盒基于同樣的的原理,利用銀染技術檢測端粒酶的活性。陽性結果在凝膠電泳上顯示相隔6bp的梯狀條帶,條帶的多、寡、深或淺表示端粒酶活性的大小。TRAP-銀染法保留了傳統TRAP法靈敏度高、特異性強等優點,避免了同位素的放射污染。同時,還增設了內標準物,提供陽性對照品,優化了引物設計,使PCR效果進一步提高,使之能夠高靈敏的檢測到細胞和組織提取物中端粒酶的活性。

試劑盒組成:

組分

50 次實驗量

Wash buffer

11ml

Lysis buffer

2.2ml

10×PCR buffer

140μl

dNTPs

165μl

Primer1

165μl

Primer2

28μl

Primer3

110μl

Taq -DNA Polymerase

17μl

ddH2O

750μl

陽性對照模板

55μl

內標準模板

55μl

 

操作步驟

1、端粒酶的提取

⑴ 手術后取下的活組織,立即保存在液氮之中。

⑵ 40~100mg 冷凍(-70%℃)組織用無菌眼科手術剪盡量剪碎,研磨器研磨,加入 40 ul Lysis buffer(使用前每 ml Lysis buffer 加入 2μl  β-巰基乙醇);或 1~2×106 沉淀細胞直接加入 40µl 預冷的 Lysis buffer,懸浮細胞,渦旋振蕩10s, 置冰浴中 30min,每間隔數分鐘渦旋振蕩一次,共 5-6 次。

備注:為了獲取比較理想的端粒酶提取液,建議在一些干硬組織中適當加入 Wash buffer。

⑶ 4℃離心(13000rpm,20min)。

⑷ 移取上清,分裝 3-4 管,每管約 20μl。其中一份樣品用于蛋白質濃度定量,其余迅速冷凍,-70℃保存。

 TRAP-銀染法端粒酶活性檢測試劑盒

2、PCR 擴增(1×25ul)

 

3、PCR 擴增:

⑴ 每管加入Ⅰ液 9μl 及端粒酶提取液 1μl,混勻,30℃反應 30min。

⑵ 上述各管 93℃加熱 1min 滅活。

⑶ 向上述各管中加入預熱至 93℃的Ⅱ液各 13ul,混勻,進行第一步擴增。擴增條件如下:

第一步:

步驟

時間

溫度

預變性

3m

93

變性

35s

93

退火

35s

42

延伸

90s

72

循環數

5

延伸

60s

72

 

(4)在第一步擴增最后一個循環的延伸一步的最后幾秒,暫停儀器運行,快速向各管中加入primer3 2ul 和稀釋后的內標準模板1ul。繼續運行儀器,進行第二步擴增。擴增條件如下:

(5)

第二步(連接第一步):

 

步驟

時間

溫度

預變性

60s

93

變性

40s

93

退火

40s

60

延伸

50s

72

循環數

36

延伸

8m

72

 

4、10%聚丙烯酰胺凝膠電泳(所有溶液,用戶自備)

⑴ 制備 10%非變性聚丙烯酰胺凝膠(20ml)。

ddH2O11.19 ml

36%Acr-1%Bis5.46 ml

5%TEMED0.4 ml

10×電泳緩沖液2 ml

1.25% APS1 ml

⑵ 取10ul PCR產物與2ul上樣緩沖液混合后加樣,用0.5×電泳緩沖液作為電極緩沖液,180V電泳2h。

⑶ 小心剝離凝膠,并置于50%甲醇、10%醋酸中,固定過夜。

備注:

① 10×電泳緩沖液:15g Tris 、14g 硼酸和1.17g EDTA (不帶 2Na)  ,用ddH2O定容至 200ml。

② 10×上樣緩沖液:0.01%溴酚蘭、40%甘油、62.5mM Tris-HCl(pH6.7)

5、銀染(所有溶液,用戶自備)

⑴ 將凝膠置于 10%醋酸固定30min后用蒸餾水漂洗3次,每次5min;

⑵ 將凝膠置于0.2g/L 硫代硫酸鈉浸泡1min, 然后用蒸餾水漂洗3次,每次30s;

⑶ 將凝膠置于硝酸銀染液中浸泡 30min, 然后用蒸餾水漂洗 30s;

⑷ 將凝膠置于顯影液中顯色 10min 左右直到全部條帶顯色清晰為止;

⑸ 將凝膠置于 5%醋酸中浸泡終止反應。

⑹ 選擇適當時機照相。

備注:

① 硝酸銀染液:0.2g AgON3、25ul 37%甲醛,定容至 100ml。

② 顯色液:3g Na2CO3、25ul 37%甲醛、0.4mg 硫代硫酸鈉,定容至 100ml。

6使用凝膠分析軟件進行結果分析

 

實驗方法的說明

1、端粒酶的提取:端粒酶本身有RNA 和酶功能基團,極其容易被降解、失活。因此,應該按提取細胞總RNA 的要求,盡量在低溫條件下,快速操作。簡化不必要的反復洗滌程序,提高提取液的蛋白質濃度。小量分裝,盡量避免反復凍融。2、反應前,測定每個樣品的蛋白質濃度,并稀釋至同一濃度,以保證端粒酶樣品加入量基本一致。

3、為了讓實驗更具有客觀性,實驗時,請務必設定陽性對照和陰性對照,本試劑盒提供陽性對照的模板,并提供陰性對照的實驗方法。陽性對照的實驗方法:另設一陽性對照管,以陽性對照模板代替端粒酶提取液加入即可。陰性對照的實驗方法:可以把III液混合,每管24ul混合液,再加入端粒酶提取液,混勻后直接在90℃加熱10min滅活,不經過PCR擴增,直接電泳,以排除樣品中存在的蛋白質對核酸銀染的干擾。

4、關于內標準模板的使用為了便于進行各樣品間端粒酶活性的比較,我們提供了內標準物。該內標準物可以作為模板,用于檢測端粒酶活性的同一對引物進行擴增。內標準模板擴增片段長度為:50bp。

該內標準物的使用有兩種方法:

第一種方法:將內標準物以一定量加入到端粒酶樣品之中,用同一對引物在同一擴增管內進行競爭性擴增。然后通過比較電泳圖譜中內標準物和端粒酶擴增帶的相對強度,即可達到相對定量的目的。考慮到實驗方法的靈敏度,并避免PCR 擴增時的平臺效應,只有當端粒酶的模板(與其活性相對應)和內標的模板比例相接近時,方能得到較理想的分析效果。

基于不同來源樣品的端粒酶的活性不同,需要將高濃度的模板進行一系列的稀釋,比如依次稀釋為100、1000、10000、100000、1000000 等倍數,分別取1ul與等體積的端粒酶樣品混合后作為模板,進行擴增。選擇一個內標準物和端粒酶均能明顯擴增的稀釋度用于今后的實驗。此種方法從理論上講更嚴謹,考慮到了模板的長度,擴增效果和端粒酶活性的關系,但是需要客戶自己摸索最佳條件。實驗室建議在端粒酶活性比較高的情況下將內標準模板稀釋105再進行擴增。

第二種方法:是將我們提供的高濃度內標準物,在進行電泳時加入。這樣也能夠實現半定量分析,而且方法簡單可行。 

 

常見問題

1、細胞提取物中沒有足夠的端粒酶:在冰浴條件下制備細胞和組織提取物,盡量縮短制備時間,適當用較高濃度的端粒酶樣品,減少不必要的操作。

2、端粒酶的反應時間不夠:保證反應時間不少于20min。

3、所有樣品和陰性對照都成陽性:PCR殘余污染。PCR反應的每一組分勿重復使用保證使用潔凈的PCR管和PCR試管架

4、同一種組織會有不同的端粒酶的表達活性:動物本身就有種內差,每個個體的端粒酶的表達活性情況也會不一樣。同一個體的不同組織(如睪丸/骨髓)端粒酶的表達也不一定相同。同一個體的同一組織的不同部位端粒酶的表達情況也不一定相同。

5、腫瘤組織中沒有出現預期的端粒酶條帶:腫瘤組織中端粒酶的表達達85%,也有部分腫瘤組織中沒有端粒酶的表達,所以極少數腫瘤組織中有可能沒有出現端粒酶的條帶。

6、陽性對照中看不到梯度:因反復凍融會導致陽性對照中的端粒酶失活,所以應注意低溫操作。

7、陰性對照里有梯度條帶出現:PCR產物、lysis buffer及反應試劑等交叉污染,請將PCR擴增產物提取區域和反應試劑配制區域分開。另外請經常使用手套。電泳上樣時的交叉污染,每次上樣時更換槍頭。

8、由于熱處理、RNase處理不充分而引起梯度條帶消失:將要使用的槍頭用DEPC水浸泡至少24小時,再進行高壓滅菌,烤干;提取樣品所用的玻璃制品、陶瓷品及手術器械等經烤箱170℃烘烤5個小時。

9、端粒酶活性不高:改善端粒酶反應條件,適當增加端粒酶反應時間,適當增加PCR循環數(但要避免達到平臺效應,使非特異性擴增大量出現),避免lysis buffer的惡化,盡量減少端粒酶樣品反復凍融。實驗操作的指導原則是快速,低溫。

質量檢測報告

產品名稱:TRAP-銀染法端粒酶活性檢測試劑盒(TRAP-Silver Staining Telomerase Detection Kit)

HL-60細胞在37℃,5%CO2 培養箱培養,并利用本試劑盒進行檢測,經電泳檢測PCR產物,呈現陽性梯帶,視為合格。  


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