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葡萄糖檢測試劑盒(Folin-Wu比色法)

發布時間:2022/8/15 8:50:13      閱讀次數:484

 葡萄糖檢測試劑盒(Folin-Wu比色法) 

一、產品簡介:

葡萄糖(Glucose, Dextrose,Glu)又稱玉米葡糖,簡稱葡糖,化學式C;H1zO6,分子里為180.16,是自然界分布最廣、最重要的一種單糖,屬于多羥基醛。用酶學方法測定葡萄糖是生化檢測中的常用方法,最常用的有葡萄糖氧化酶法、己糖激酶法,上述酶學法特點是:1、靈敏度、準確度、精密度均高;2、使用溫和的反應條件;3、操作簡便;4、適用于自動分析儀,測定葡萄糖亦可通過鄰甲苯胺法、苯胺法、聯苯胺法等實現。

雅吉生物葡萄糖檢測試劑盒(Folin-Wu比色法)檢測原理是葡萄糖在加熱的堿性環境中銅離子還原成氧化亞銅沉淀,后者使磷鉬酸還原成鉬藍,使溶液呈藍色,顏色深淺與葡萄糖含量成正比,其最高吸收峰為420nm,利用分光光度計測定樣品和標準品的吸光度值,通過公式可以計算出樣品的葡萄糖含量,可用于人或動物的血清、血漿、腦脊液、細胞、組織細胞培養基等樣本中的葡萄糖含量定量測定。

該試劑盒僅用于科研領域,不適用于臨床診斷或其他用途。

二、產品組成:

名稱

60T

Storage

試劑(A): Glu標準儲存液(55mmol/L)

2ml

4℃

試劑(B):蛋白酸化液

60ml

RT

試劑(C):蛋白沉淀液

60ml

4℃

試劑(D): Folin堿性銅溶液

30ml

RT

試劑(E):Wu磷鉬酸溶液

30ml

4℃避光

 

三、自備材料:

1、蒸餾水、PBS、生理鹽水

2、離心管

3、水浴鍋

4、分光光度計

 葡萄糖檢測試劑盒(Folin-Wu比色法)

四、操作步驟(僅供參考)

1、樣本處理

血清、血漿、腦脊液樣本從待測樣本中分離出的血清或血漿不應有溶血,一般需要去除。蛋白質(即為無蛋白血濾液)后再經檢測。取抗凝血1ml,加入7ml蒸餾水和1ml蛋白酸化液,混勻,緩慢加入1ml蛋白沉淀液,邊加邊搖勻,至出現暗紅色蛋白質沉淀,靜置10min ,3000g離心5min,取上清液即為無蛋白血濾液,4℃保存備用。

組織樣本準確稱取適量組織樣本,按質量(g)生理鹽水或PBS(ml)=1:9的比例,加入生理鹽水或PBS,冰浴條件下手動或機械勻漿,2500~3000g離心10min,取上清待用。

細胞樣本

a. 取適量的細胞(一般推薦>10以上),1000g 離心10min,棄上清,留取沉淀。

b. PBS或生理鹽水清洗1~2次,1000g離心10min,棄上清,留取沉淀。

c. 加入200~300ul的PBS或生理鹽水勻漿,冰浴條件下超聲破碎細胞,功率300W,每次3~5s,間隔30s,重復3~5次;亦可手動勻漿,制備好的勻漿液不可離心;亦可用1~2% Triton X-100冰浴30~60min,制備好的裂解液不可離心。

 

2、制備Glu標準應用液(0.55mmol/L )10ul Glu標準儲存液(55mmol/L),補加蒸餾水或者無菌水990ul,充分混勻即可。根據需用量,臨用前按比例配置,不宜久存。

 

加入試劑(ml)

空白管

標準管

測定管

蒸餾水

1.5

1

1

Glu標準應用液(0.55mmol/L)

-

0.5

-

無蛋白血濾液或其他待測樣本

-

-

0.5

Folin堿性銅溶液

0.5

0.5

0.5

Wu磷鉬酸溶液

0.5

0.5

0.5

3、Glu加樣按照下表設置空白管、標準管、測定管,溶液應按照順序依次加入,并注意避免產生氣泡,如果樣品中的Glu濃度過高,可以減少樣品用量或適當稀釋后再進行測定。

充分混勻,置于沸水浴煮沸8min,取出,在冷水中冷卻,注意不能搖動,靜置10min,分別加入3.75ml蒸餾水。

 

4、Glu測定∶取不大于2ml上述溶液,以空白管調零,用分光光度計在420nm處讀取標準管和測定管的吸光度。

 

 

 

五、結果計算

葡萄糖含量(mmol/L)=(測定管吸光度/標準管吸光度)×0.55×10

=(測定管吸光度/標準管吸光度)×5.5

其中10為去蛋白樣品的稀釋倍數

六、注意事項:

1、待測樣本如不能及時測定,應置于2~8℃保存,3天內穩定。

2、上述低溫試劑避免反復凍融,以免失效或效率下降。

3、Glu標準應用液臨用前按比例配置,不宜久存。

4、如樣品吸光度值偏大,則需再次稀釋后重新檢測。

5、樣品中含有蛋白等干擾物質時,須用去蛋白的方法處理后再行檢測。

6、煮沸時不能動搖,避免液體濺出。

七、 有效期6個月有效。4℃保存,4℃運輸。

 


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