注 意 ：正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
LDH（EC 1.1.1.27）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，是糖酵解途徑的末端酶，催化丙酮酸與乳酸之間的可逆反應，伴隨著NAD+/NADH之間互變。
測定原理：
LDH催化NAD+氧化乳酸生成丙酮酸，丙酮酸進一步與2, 4 - 二硝基苯肼作用生成丙酮酸二硝基苯腙，在堿性溶液中顯棕紅色，顏色深淺與丙酮酸濃度成正比。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、恒溫水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1 mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制：
提取液：30mL×1瓶， 4℃保存；
試劑一：液體15 mL×1瓶， 4℃保存；
試劑二：粉劑×1支，-20℃保存，用時加入10μL試劑五和1.3 mL蒸餾水充分溶解備用，用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；
試劑三：液體15 mL×1瓶，4℃保存；
試劑四：液體50 mL×1瓶，4℃保存；
試劑五：液體100μL×1支，4℃保存；
樣品測定的準備：
1、細菌、細胞或組織樣品的制備：
細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為1000~5000：1的比例（建議2000萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2、血清（漿）樣品：直接檢測。
測定步驟：
1、 分光光度計預熱30min以上，調節波長至450nm，蒸餾水調零。
2、樣本測定（在EP管中加入下列試劑）
| 試劑名稱(μL) | 測定管 | 對照管 |
| 樣本 | 50 | 50 |
| 試劑一 | 250 | 250 |
| 試劑二 | 50 |
|
| 蒸餾水 |
| 50 |
充分混勻，37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴15min
| 試劑三 | 250 | 250 |
充分混勻，37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴15min
| 試劑四 | 750 | 750 |
充分混勻，室溫靜置15分鐘，450 nm下測定吸光度，計算ΔA=A測定管-A對照管。每個測定管需要設一個對照管。
LDH活力單位的計算：
1、標準條件下測定的回歸曲線， y = 0.9108x+0.0037 (x為標準品濃度，umol/mL；y為ΔA)。
2、血清（漿）LDH活力的計算
單位的定義：每mL血清（漿）每分鐘催化產生1nmol丙酮酸定義為一個酶活力單位。
LDH（nmol/min/mL）=（ΔA-0.0037）÷0.9108÷T×103=73.2×ΔA
3、細胞、細菌和組織中LDH活力的計算
（1）按樣本蛋白濃度計算：
單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘催化產生1 nmol丙酮酸定義為一個酶活力單位。
LDH（nmol/min/mg prot）=[（ΔA-0.0037）÷0.9108×V1]÷(V1×Cpr)÷T×103 =73.2×ΔA÷Cpr
需要另外測定，建議使用本公司BCA蛋白質含量測定試劑盒。
（2） 按樣本鮮重計算：
單位的定義：每g組織每分鐘催化產生1nmol丙酮酸定義為一個酶活力單位。
LDH（nmol/min/g鮮重）=[（ΔA-0.0037）÷0.9108×V1]÷(W×V1÷V2)÷T×103 =73.2×ΔA÷W
（3）按細菌或細胞密度計算：
單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘催化產生1nmol丙酮酸定義為一個酶活力單位。
LDH（nmol/min/104 cell）= [（ΔA-0.0037）÷0.9108×V1]÷(2000×V1÷V2)÷T×103 =0.037×ΔA
V1：加入反應體系中樣本體積，0.05mL；V2：加入提取液體積，1 mL；T：反應時間，15 min；Cpr：蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；2000：細胞或細菌總數，2000萬。
1、 標準曲線線性范圍為：0.1 umol/mL -2 umol/mL。
2、 ΔA線性范圍為：0.01 -2。
