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注 意：正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義：
TPX屬于過氧化物酶家族，在體內主要通過還原過氧化氫和一些氫過氧化物來實現抗氧化作用，功能與GPX類似，也是谷胱甘肽氧化還原循環關鍵酶之一。TPX普遍存在于各種生物體內，如酵母、植物、動物、原生動物、寄生蟲、細菌和古細菌，在進化上高度保守。TPX與細胞增殖、分化、細胞凋亡及腫瘤發生調控密切相關。TPX的主要功能包括細胞脫毒、抗氧化和調節由過氧化氫介導的信號轉導和免疫反應。
測定原理：
TPX催化H2O2氧化二硫蘇糖醇（DTT），H2O2的吸收波長為240nm，通過測定240nm吸光度的下降速率，即可計算出TPX活性。
自備儀器和用品:
紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調節移液器、1mL石英比色皿和蒸餾水
試劑組成和配制:
試劑一：液體50mL×1瓶，室溫保存。
試劑二：液體50mL×1瓶，- 20℃保存。
試劑三：液體5mL×1瓶，4℃。
粗酶液提取：
1. 組織：按照組織質量（g）：試劑一體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心10min，取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數量（104個）：試劑一體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1mL試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；然后8000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。
3. 血清等液體：直接測定。
TPX測定操作：
1. 分光光度計預熱30min，調節波長到240 nm，蒸餾水調零。
2.試劑二置于25℃（一般物種）或者37℃（哺乳動物）水浴預熱30 min。
3.取1mL石英比色皿，加入20 μ L上清液，900 μ L試劑二，80 μ L試劑三，迅速混勻后于240 nm測定10 s和130 s吸光度，記為A1和A2。
