注 意：正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義：
TrxR 是一種 NADPH 依賴的包含 FAD 結構域的二聚體硒酶，屬于吡啶核苷酸-二硫化物氧化還原酶家族成員，與硫氧還蛋白以及 NADPH 共同構成了硫氧還蛋白系統。TrxR 與 GR 活性類似，催化 GSSG 還原生成 GSH，是谷胱甘肽氧化還原循環關鍵酶之一。
測定原理：
TrxR 催化 NADPH 還原 DTNB 生成 TNB 和 NADP+，TNB 在 412 nm 有特征吸收峰，通過測定 412nm 波長處 TNB 的增加速率，即可計算 TrxR 活性。
自備儀器和用品：
低溫離心機、可調節移液器、可見分光光度計/酶標儀、微量玻璃比色皿/96 孔板、和蒸餾水。
試劑組成和配制：
試劑一：液體 120mL×1 瓶，4℃保存。
試劑二：液體 2mL×1 瓶，4℃避光保存。
試劑三：粉劑×1 管，4℃保存。臨用前加入 2mL 蒸餾水溶解。
粗酶液提取：
1. 組織：按照組織質量（g）：試劑一體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1mL 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 10min，取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數量（104 個）：試劑一體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1mL 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 8000g，4℃，離心 10min，取上清置于冰上待測。
3. 血清等液體：直接測定。
TrxR 測定操作：
1. 分光光度計/酶標儀預熱 30 min，調節波長到 412nm，用蒸餾水調零。
2. 試劑一在 25℃（一般物種）或者 37℃（哺乳動物）預熱 30min。
3. 空白管：取微量玻璃比色皿或 96 孔板，加入 20μL 試劑二，20μL 試劑三，160μL 試劑一，迅速混勻后于 412 nm 測定 10 s 和 310 s 吸光度，記為 A1 和 A2。△A 空白管=A2-A1。
4. 測定管：取微量玻璃比色皿或 96 孔板，加入 20μL 試劑二，20μL 試劑三，140μL 試劑一， 20μL 上清液，迅速混勻后于 412 nm 測定 10 s 和 310 s 吸光度，記為 A3 和 A4。△A 測定管
=A4-A3。
注意：空白管只需測定一次。
TrxR 活性計算公式：
(1). 按蛋白濃度計算
活性單位定義：在 25℃或者 37℃中，每毫克蛋白每分鐘催化 1nmol DTNB 還原為 1 個酶活單位。
TrxR（nmol/min /mg prot）=（△A 測定管-△A 空白管）÷ε÷d×V 反總÷(Cpr×V 樣)÷T = 147×（△A 測定管-△A 空白管）÷Cpr
(2). 按樣本質量計算
活性單位定義：在 25℃或者 37℃中，每克樣本每分鐘催化 1nmol DTNB 還原為 1 個酶活單位。
TrxR（nmol/min /g 鮮重）=（△A 測定管-△A 空白管）÷ε÷d×V 反總÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T
