- 介紹： 基 因 型F- gyrA462 endA1 glnV44 Δ(sr1-recA) mcrB mrr hsdS20(rB-, mB-) ara14 galK2 lacY1 proA2 rpsL20 (SmR) xyl5 Δleu mtl1簡 要 說 明 DB3.1大腸桿菌菌株基因組中含有gyrA462基因，賦予其對ccdB毒性基因的抗性，特別適用于構建或擴繁含有ccdB基因的質粒載體 (例GATEWAY System vector)，此菌株具有鏈霉素抗性。生物生產的DB3.1電擊感受態細胞經特殊工藝制作，pUC19質粒檢測轉化效率>2×1010 cfu/μg DNA。
- 操 作 說 明
- 1. 0.1 cm 電擊杯和杯蓋從儲存液中拿出倒置于干凈的吸水紙上5分鐘，待其瀝干水分，正置5分鐘，待乙醇揮發干凈立即插入冰中，壓實冰面，電極杯頂離冰面0.5 cm以方便蓋上杯蓋，冰中靜置5分鐘充分降溫。
- 2. 取-80℃保存的DB3.1電擊感受態細胞插入冰中5 分鐘，待其融化，加入目的DNA (質粒或連接產物)并用手撥打EP管底輕輕混勻，避免產生氣泡，立即插入冰中。
- A. 測定轉化效率使用1 μl 10 pg/μl的對照質粒 pUC19；
- B. 對于連接產物，大部分公司的T4連接酶反應體系或50度反應重組體系可與DB3.1電擊感受態混合后電擊轉化，無需進行DNA純化，但DNA濃度不能過高，DNA濃度不超過100 ng/μl，體積不超過5 μl/50 μl感受態。
- C. 對鹽濃度較高的DNA溶液或反應體系請用乙醇沉淀DNA后加入適量TE緩沖液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM EDTA)重懸，然后與DB3.1電擊感受態混合進行電擊轉化。3. 用200 μl槍頭(用刀切除0.5cm槍尖)將感受態-DNA混合物快速移到電擊杯中，避免產生氣泡，蓋上杯蓋。
- 4. 啟動電轉儀，設置參數：C=25 μF，PC=200 Ω，V=1.8 kV (此為BioRad 電轉儀推薦參數，也可按所用電轉儀推薦的參數操作），將電擊杯快速放入電轉槽中，電擊完成快速插入冰中。
- 5. 2分鐘后從冰中取出電擊杯，放室溫，加入700 μl不含抗生素的無菌S.O.C. 培養基（室溫），用1ml 槍吹吸電擊杯底部數次混勻后，轉移到50 ml離心管（BD Falcon 50 ml錐形離心管等），向離心管中補加S.O.C. 培養基至10 ml。37℃，225 rpm復蘇60分鐘。
- 6. 5000 rpm離心一分鐘收菌，重懸后取100-200 μl涂布到含相應抗生素的S.O.C平板上（因菌量較大，若全部涂板請選用直徑15cm培養皿2-5個）。將平板倒置放于37℃培養箱過夜培養13-17小時。
- 注 意 事 項
- 1. 加入DNA時體積不應大于感受態體積的1/10。
- 2. 電擊感受態細胞加入電擊杯應避免產生氣泡，氣泡會增加弧光放電風險。
- 3. 當DNA不純或存在鹽，乙醇，蛋白及緩沖液等污染時，轉化效率急劇下降。
- 4. 電擊杯里的離子可增加溶液的電導，增大在含有細胞和DNA的溶液中產生電流和弧光放電的風險。
- 5. 若轉化大質粒或想獲得較高轉化效率，推薦使用高純質粒提取試劑盒提取質粒。質粒增大一倍，轉化效率下降一個數量級。6. 對于連接產物轉化，部分公司的連接體系或重組體系(例如：Thermo，NEB公司的T4 連接酶系統，NEB，天根的50度反應重組系統)可以直接與DB3.1電擊感受態混合后電擊轉化，無需純化，但DNA濃度不能過高，最好不超過100 ng/μl。過高濃度連接產物或過大體積連接產物會降低轉化效率，增加弧光放電的風險。
- 7. 混入質粒時應輕柔操作，吸取感受態細胞時避免用力過猛，以免剪切力過大損傷細胞膜，降低轉化效率。轉化高濃度的質粒或連接產物可相應減少最終用于涂板的菌量。8. 電擊感受態細胞最好保存在-80℃以下，高于-80℃超期儲存會導致轉化效率會下降。
- 儲存條件： -80℃
- 用途： 克隆感受態細胞
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