Stbl3 菌株來源于 HB101 E. coli strain，是慢病毒載體系統推薦使用的菌株。基因組含有重組酶 recA13 突變，可有效抑制長片段末端重復區的重組，降低錯誤重組的概率；但不含核酸酶 endA1 突變， 體內核酸酶含量較高，提取質粒時務必使用質粒提取試劑盒中去蛋白液。此菌株具有鏈霉素抗性，不存在 lacIqZΔM15，不可用于藍、白斑篩選。Stbl3 感受態細胞經特殊工藝制作，經 pUC19 檢測轉化效率 >108cfu/μg DNA。
操作說明
1.Stbl3 感受態細胞放置冰中融化（或放手心或室溫片刻，待菌體處于冰水混合狀態時迅速插入冰中）， 加入目的 DNA（質粒或連接產物）并用手撥打 EP 管底輕輕混勻，冰上靜置 25 分鐘。
2.42℃水浴熱激 45 秒，迅速放回冰上并靜置 2 分鐘，晃動會降低轉化效率。
3.向離心管中加入 0.9 mL 室溫 S.O.C. 培養基或 LB 培養基（推薦使用 SOC 培養基，可提高轉化效率）。
4.30℃，225 rpm 復蘇 90 分鐘。 （當質粒中含有不穩定片段時， 30℃培養可降低錯誤重組的概率，若轉化 control PUC19 計算轉化效率，則需 37℃， 225 rpm 復蘇 60 分鐘。）
5.5000rpm 離心一分鐘收菌，留取 100μl 左右上清輕輕吹打重懸菌塊并涂布到含相應抗生素的 S.O.C. 培養基上。
6.將平板倒置放于 30℃培養箱過夜培養。（若轉化 control PUC19 計算轉化效率，則需 37℃培養過夜）
注意事項
1.對不穩定 DNA 片段的克隆或逆轉錄病毒/慢病毒載體的構建，涂板后平板應在 30℃培養，以減少發生
錯誤重組的概率。
2.制備高純度病毒質粒時，應使用新鮮轉化的平板接菌，新鮮菌液提取質粒，菌液不可低溫保存后使用。
3.對不穩定的克隆或病毒質粒優先以質粒狀態保存，盡量避免將質粒保存在大腸桿菌細胞中。
4.S.O.C.或 LB 培養基均可使用，S.O.C.可提高轉化效率 20%；實驗人員可選擇在 37℃或 30℃培養細胞，
37℃條件下，菌生長速度加快，有利于提高質粒產量，30℃培養可降低錯誤重組概率。
5.感受態細胞最好在冰中緩慢融化。插入冰中 8 分鐘內加入目標 DNA，不可在冰中放置時間過長，長時
間存放會降低轉化效率。混入目的 DNA 時應輕柔操作。
6.轉化高濃度的質粒或高效率的連接產物可相應減少最終用于涂板的菌量。
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