| 大豆源性成分染料法熒光定量 PCR 試劑盒可用于檢測食品或其他材料中是否有大豆的成分。現代食品加工工藝極大 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 改變了食材原有的味道、氣味、色澤、紋理和質地等特性，因此傳統的感官鑒別技術已 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 經無法對食材的真偽進行準確的鑒定。同時部分食材還有致敏性，因此基于基因檢測的 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 快速靈敏的食材來源檢測技術將對食品監管和安全提供重要的保障。本產品就是為滿足 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 這一需求根據 PCR 原理開發的產品，它具有下列特點： | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 1. 即開即用，用戶只需要提供樣品 DNA。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 2. 根據大豆保守區域設計引物，能專一性地檢測出樣品中的大豆成分，但不能檢測其 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 他非大豆成分。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 3. 熒光定量 PCR 檢測，比常規 PCR 更加靈敏。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 4. 快速，整個檢測過程（按一個樣品計）所需時間僅為 2.0 小時。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 5. 一管式閉管操作，降低了交叉污染。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 6. 提供陽性標準品，便于分析實驗結果。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 7. 對混合樣品中大豆成分的檢測下限為 0.01%，對樣品中大豆成分的核酸檢測下限為 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 0.1ng/µL。 | ||||||||||||||||||||||||||||||
| 8. 本只能用于科研，足夠 50 次 20uL 體系的熒光定量 PCR。
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低溫運輸，-20℃保存，有效期一年。使用本試劑盒提供的陽性對照時，由于其濃度較
高，一定要注意不要污染其他試劑和成分。最好在專門的區域操作。
| 一、稀釋標準曲線樣品（以 10E2-10E7 拷貝/μL 這 6 個 10 倍稀釋度為例）。由于標 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 準品濃度非常高，因此下列稀釋操作一定要在獨立的區域進行，千萬不能污染樣品或本 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 試劑盒的其他成分）。為增加產品穩定性和避免擴散傳染性病原，本產品不提供活體樣
1.標記 6 個離心管，分別為 7，6，5，4，3，2。 2.用帶芯槍頭分別加入 45 μL 熒光 PCR 專用模板稀釋液，最好用帶芯槍頭，下同）。 3.在 7 號管中加入 5 μL 陽性對照（濃度為 1×10E8 拷貝/μL，試劑盒提供)，充分 震蕩 1 分鐘，得 1×10E7 拷貝/μL 的標準曲線樣品。放冰上待用。 4.換槍頭，在 6 號管中加入 5 μL 1×10E7 拷貝/μL 的陽性對照(上步稀釋所得)， 充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E6 拷貝/μL 的標準曲線樣品。放冰上待用。 5.換槍頭，在 5 號管中加入 5 μL 1×10E6 拷貝/μL 的陽性對照(上步稀釋所得)， 充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E5 拷貝/μL 的標準曲線樣品。放冰上待用。 6.重復上面的操作直到得到 6 個稀釋度的標準曲線樣品。放冰上待用。 二、樣品 DNA 的制備 7.用自選方法純化樣品的 DNA，本產品跟市場上絕大多數核酸純化產品兼容。 8.如果有 N 個樣品，則需要進行 N+2 個樣品提取，多出的一個用作樣品制備陽性對 照管、另一個用作樣品制備陰性對照管。如果用本試劑盒自帶的 DNA 釋放 劑試用裝。則按下面步驟操作： 9.配制溶液 A 工作液。以配制 1mL 工作液（足夠 10 個樣品）為例：在一干凈塑料 管中加入 10uL 溶液 A 成分一，20uL 溶液 A 成分二和 970uL 超純水，充分混合 均勻即可。溶液 A 工作液可室溫放置，但最好在一周內用完，不要長期放置。一 次檢測一個樣品需要 100uL 溶液 A 工作液，1mL 工作液足夠 10 個樣品。如果待 測樣品數量為其他數字，配制的溶液 A 工作液的體積需要做相應的調整。 10. 在標記好的 N+2 個離心管中，加入 1-5mg 固體樣品（半粒芝麻大小）或 5uL 液 體樣品待測樣品。在樣品制備陽性對照中加入 5uL 陽性對照，在樣品制備陰性對 照中加入 5uL 水。
11. 在每個管中加入 100 uL 溶液 A 工作液，確保固體樣品被溶液淹埋，如果是液體樣 品則震蕩混勻。 12. 95℃保溫 10 分鐘。 13. 待冷卻到常溫后加入 10uL 溶液 B 并混勻得 DNA 釋放液。每個樣品得到的 DNA 釋放液足夠進行 50-100 次 PCR。 三、設置 qPCR 反應（20μL 體系，在樣品制備室進行）
14. 如果只做 1 次重復，則標記 N+9 個 PCR 管，其中 N+2 個用于上步得到的 N+2 個 樣品，1 個用于 PCR 陰性對照，6 個用于標準曲線樣品（也充當 PCR 陽性對照）。 如果做 2-3 次重復，則反應設置數量相應增加 2 或 3 倍。
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