描述：有大量證據表明，在動物和植物膜系統中都存在抗去污劑膜（DRM）的亞結構域，即脂筏。脂筏增加了鞘脂蛋白的比例和膽固醇濃度。脂筏在真核細胞的信號轉導和蛋白質轉運中起著重要作用。傳統分離脂筏的方法包括冷的非離子去污劑提取，然后使用蔗糖梯度超速離心，這種方法需要大量的起始樣品（數百克），并且除了耗時的操作外，還需要專用設備。為此我們開發了這種從植物組織中快速分離提取脂筏的方法，僅需毫克級的起始樣品，無需超高速離心，約1小時即可完成脂筏的分離。
應用：試劑盒用于快速從植物組織中富集天然脂筏，可應用于 SDS-PAGE，immunoblottings，ELISA，IP，膜蛋白質結構分析，2-D，酶活性測定及其他應用。
儲存溫度：4℃
試劑盒組分： 1. 緩沖液 A 10ml 2. 緩沖液 B 10ml 3. 緩沖液 C 1.2ml 4. 緩沖液 D 10ml 5. 塑料研磨棒 2 根 6. 蛋白提取粉 2g 7. 離心管柱/收集管 20 套 運輸儲存：常溫運輸，4 度保存
重要產品信息：
1. 操作前請仔細閱讀整個操作說明。緩沖液 A，B，C 使用前放置于冰上預冷。
2. 離心機請調整成 RCF 模式（xg），所有離心步驟都需要在 4℃室溫下或者低溫離心機中進行。
3. 研究蛋白磷酸化，磷酸酶白酶抑制劑應在使用前加入緩沖液 A 中。（請按照蛋白酶或磷酸酶抑制劑母液比例添加，例如母液是 100x，添加時按照 1：100 添加，即 1ml 緩沖液 A 添加 10ul 抑制劑）。
4. 需準備預冷的 ddH2O。
5. 請勿使用液氮研磨，研磨方式請按說明書進行。
操作方法：
1. 將 200-250mg 新鮮植物葉片或幼苗加到離心管柱中，將葉片折疊卷起塞入到離心管柱套管中。加入 100ul緩沖液 A，用 200ul 吸頭按壓葉片 80-100 次以壓縮葉片體積（此步大概需要 1-2min）。加 50-80mg 蛋白提取粉到離心管柱中。
2. 用試劑盒中研磨棒用力向下扭轉按壓研磨 200 次（大約 2-3min）。（注意：研磨棒可重復使用，用 70%酒精擦拭或用蒸餾水沖洗干凈，用紙巾擦干。）
3. 再加 400ul 緩沖液 A 到離心柱中，用 200ul 吸頭將樣品攪拌混勻。蓋上蓋子，8000Xg 離心 10min。這一步可以去除葉綠體，細胞核和一些大碎片。離心后，棄去離心柱，將上清轉移到一個新的 1.5ml 離心管中。
4. 16000Xg，離心 30min，棄去上清。小心的加入 1ml 預冷的 ddH2O 清洗沉淀，不要打散沉淀，將水立即棄 掉。
5. 加入 450ul 緩沖液 B 吹打沉淀重懸，再向管中加入 50ul 緩沖液 C，混勻后放于冰上孵育 30min。孵育完成后，大力渦旋震蕩 20s，10000Xg，離心 5min。離心后將上清轉移至新的 1.5ml 離心管中。
6. 加入 500ul 緩沖液 D，簡單振蕩混勻，冰上孵育 10min。孵育完成后 10000Xg，離心 5min。離心后，脂筏
會漂浮在管子最上層。
7. 用移液器配上細的吸頭（如 SDS-PAGE 上樣吸頭）插到管底，緩慢地完全去除水相。或者也可以使用配 有 21 號針頭的 2 毫升注射器。去除水相后（非脂筏的膜蛋白保留在這個水相中，如有興趣可保留），淺綠
白色的脂筏會附著在離心管壁上。
8. 將離心管 16000Xg，離心 5min，將脂筏離心到管底部，完全去除殘液。小心的加入 200μl 預冷的 ddH2O清洗沉淀，不要打散沉淀，并將水快速棄掉。得到的沉淀即是分離的脂筏組分，脂筏沉淀可以根據下游應用選擇適合的溶解液進行溶解。蛋白溶解液可根據下表進行選擇。根據樣品類型不同，最終蛋白質產量在50-100 ug/樣品范圍內。
技術要點：
1. 用于 2D 凝膠等應用分析時，分離的脂質筏可能需要透析以降低鹽濃度。
2. 第 7 步上清液中的非脂筏蛋白可以用蛋白質沉淀試劑盒沉淀。
3. 分離的脂筏主要來自質膜和其他內膜系統。
4. 可以使用傳統的有機萃取方法從分離的脂筏中進一步提取脂質。
