MycoBlue Kit是針對細胞培養物支原體污染快速檢測的試劑，使用簡便快捷，只需吸取1 μl細胞培養液上清加入反應體 系中，60℃孵育1 h，肉眼觀察即可判定結果。無需PCR/qPCR儀，無需電泳，在細胞房內即可輕松完成。與常用的PCR法 相比MycoBlue Kit對培養液上清中的抑制物耐受度更強，因此不會出現弱陽性、假陰性；反應完成后無需開蓋電泳，避免了 擴增產物氣溶膠造成的假陽性；檢測結果與目前最靈敏、最準確的qPCR法具有極高的一致性。
經驗證，MycoBlue Kit可檢測多達28種支原體，其中包括細胞培養常見的8種支原體；適用于各種懸浮、貼壁培養細 胞，包括CHO 、Vero 、雜交瘤、Sf9 、293等，且具有廣泛的培養基兼容性，因此非常適合于生物制藥企業、疫苗生產企 業、單抗生產企業、 細胞治療/胚胎實驗室以及科研實驗室的日常支原體檢測。
支原體檢測試劑盒（發光法）產品組分
| 組 分 | FH8003 (50 rxns) |
| MycoBlue Buffer | 1.2 ml |
| MycoBlue Enzyme | 50 μl |
| Positive Control | 25 μl |
| Paraffin Oil | 1.25 ml |
*包含顯色劑。
保存條件
-30 ~ -15℃保存，≤0℃運輸。
自備材料
PCR儀或水浴鍋。
注意事項
試劑保存過程中擰緊管蓋，保持密封。
適用范圍
MycoBlue Kit適用于各種懸浮、貼壁培養細胞，并對培養基、血清種類具有廣泛兼容性。經驗證的細胞和培養基血清包 括(但不限于)： 懸浮細胞：CHO 、NS0 、293F、小鼠雜交瘤、Sf9 、BHK21 、THP-1 、raji等；
貼壁細胞：Vero 、MDCK 、SP2/0 、293T 、HepG2 、HeLa 、A549 、MB-MDA231 、L929 、MEF等；
培養基：CD FortiCHO 、CDM4 、Expi 293 Medium 、CD Hybridoma 、Grace 、DMEM 、1640 、F12等； 血清：胎牛/小牛血清、馬血清、Gibco KSR血清替代物等。
支原體檢測試劑盒（發光法）實驗流程
1. 獲得細胞培養液上清
貼壁細胞：直接吸取上清。建議在細胞傳代或換液3天以上，并且匯合度達到90%左右時取樣，此時上清中支原體含量較高，便于檢出。 懸浮細胞：2,300 rpm(500 × g)離心5 min后，吸取上清。建議在細胞傳代或換液3天以上時取樣，此時支原體含量較高，便于檢出。
2. 配制反應體系
將MycoBlue Buffer從-30~ -15℃取出，待解凍后，顛倒混勻。根據待檢測樣品數量在微量離心管中配制如下反應體系:
| 組 分 | 單次反應體積(μl) |
|
| MycoBlue Buffer MycoBlue Enzyme | 24 1 | × 樣品數a × 1.1b |
a.可根據需要，每次實驗加上一個陰性對照、一個陽性對照；
b.移液器存在移液誤差，建議按照實際反應數1.1倍配制混合液，以彌補損耗。
用移液器輕輕吹打混勻，分裝到PCR管或微量離心管中，每支反應管25 μl。
3. 加樣
樣品：向反應管中加入1 μl待測培養液上清 陽性對照：加入1 μl Positive Control
陰性對照：不加入任何樣品或加入1 μl Nuclease-free ddH2O
▲如果反應是在水浴鍋中進行，則在每管中加入25 μl Paraffin Oil，以防止液體蒸發導致結果不準確。加入Paraffin Oil時請注意更換槍頭，防止樣品之間交 叉污染。
▲如果反應是在PCR儀中進行，不需要加入Paraffin Oil。
4. 反應
將水浴鍋或PCR儀溫度設置成60℃,放入反應管，孵育60 min。
▲水浴鍋實際溫度可能與設置溫度有所偏差，建議先用溫度計進行校準。實際上58 ~ 64℃反應都可以進行，但會影響檢測靈敏度。
▲不建議使用烘箱進行反應。
5. 結果判定
在一個光線良好的環境中觀察反應液顏色(建議以白紙為背景)。如果反應液顏色仍為紫色，則判定為支原體陰性；如果反應液顏色變成天 藍色，則判定為支原體陽性。在少數情況下(如支原體含量較低)，反應液顏色可能會介于紫色和天藍色之間，此時可將反應時間持續延 長到75 - 90 min，如果顏色變為天藍色，則判定為陽性，否則判定為陰性。顏色反應如下圖所示，以陰性對照與陽性對照作為參考。
陰性 陽性
▲反應產物不可開蓋，否則產生的氣溶膠會導致后續檢測假陽性的出現。建議將反應管包扎在塑料袋或手套中 ，丟棄到專用垃圾桶中，并及時清理。
支原體檢測試劑盒（發光法）常見問題及解決方案
MycoBlue Kit 的靈敏度是多少？如何保證檢測靈敏度？
MycoBlue Kit 可從1 μl培養液上清中準確檢出至少500 cfu的支原體，即靈敏度為5 × 105 cfu/ml 。通常情況下，培養 液上清中的支原體 含量在106 - 108 cfu/ml之間，該試劑可以滿足絕大多數實驗的需要。據文獻報道，單個支原體感染細胞后，在3 - 5天 內可增殖至106 cfu/ml 。因此，建議在換液或傳代3天后再進行檢測。
加入培養基上清后，反應液立即變色；或者反應結束后，反應液顏色呈現紫色與天藍色以外的顏色，是什么原因？如何解決？
在極少數情況下，培養基成分會對MycoBlue試劑的顏色產生干擾，比如Cell Boost 5(Hyclone)會使MycoBlue試劑呈現出粉紅色。
處理方法：①取少量培養液上清或細胞懸液，2,300 rpm(500 × g)離心5 min，收集上清；②高速離心(>11,200 rpm (12,000 × g))5 min， 使上清中可能存在的支原體沉淀。棄掉大部分上清，保留約50 μl；再加入950 μl Nuclease-free ddH2O，用移液器吹打混勻；③重復 步驟②三次，棄掉大部分上清，保留約50 μl；④取1 μl進行檢測。
操作過程中如何避免出現假陽性？
最重要的是反應結束后，避免開蓋，否則反應產物會產生氣溶膠污染，導致后續檢測出現假陽性。另外，加樣時注意更換槍頭， 并將 陽性對照放在最后一管加入，也可以進一步降低假陽性出現的風險。
如果出現支原體污染如何補救？
若發現細胞存在支原體污染，建議直接丟棄，防止污染其它細胞。可嘗試使用支原體清除劑，對細 胞進行挽救。
MycoBlue Kit 可以檢測多少種支原體？
MycoBlue Kit 可以準確檢出28種支原體：
| A. laidlawii* | M. salivarium* | M. neophronis | M. primatum | M. gallinarum | M. lipophilum |
| M. hominis* | M. pirum* | M. timone | M. leopharyngis | M. sphenisci | M. falconis |
| M. arginini* | M. orale* | M. caviae | M. maculosum | M. bovigenitalium | M. alkalescens |
| M. fermentans* | A. granularum | M. alvi | A. oculi | M. auris |
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| M. hyorhinis* | A. pleciae | M. bovis | M. iners | M. columbinum |
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*超過95%以上的細胞是被這8種支原體所污染。
