正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：海藻糖是由兩個葡萄糖分子以α ， α- 1- 1 糖苷鍵連接而成的一種非還原雙糖， 廣泛存在于細菌、酵母菌、霉菌、食用菌、低等植物、昆蟲、 無脊椎動物和高等植物等多種有機體中。 海藻糖的非還原性決定了它對酸、堿、高溫等的穩定性。 另外， 它本身具有很強的吸水性， 使它在生物體內具有抗脫水作用， 在逆境條件下可通過識別外界刺激、產生和傳遞信號、基因表達和代謝調節來保護植物免受不良環境的傷害。植物體內主要以葡萄糖為底物合成海藻糖，該反應首先在海藻糖-6-磷酸合成酶（trehalose-6-phosphate synthase ，TPS）的作用下，催化尿苷二磷酸葡萄糖（UDPG）和 6-磷酸葡萄糖反應生成中間產物6-磷酸海藻糖， 再在海藻糖-6-磷酸磷酸酶 （trehalose6-phosphatephosphatase ，TPP）的作用下去磷酸化，生成海藻糖。因此，測定TPS活性對于研究植物逆境具有重要意義。
測定意義：海藻糖是由兩個葡萄糖分子以α ， α- 1- 1 糖苷鍵連接而成的一種非還原雙糖， 廣泛存在于細菌、酵母菌、霉菌、食用菌、低等植物、昆蟲、 無脊椎動物和高等植物等多種有機體中。 海藻糖的非還原性決定了它對酸、堿、高溫等的穩定性。 另外， 它本身具有很強的吸水性， 使它在生物體內具有抗脫水作用， 在逆境條件下可通過識別外界刺激、產生和傳遞信號、基因表達和代謝調節來保護植物免受不良環境的傷害。植物體內主要以葡萄糖為底物合成海藻糖，該反應首先在海藻糖-6-磷酸合成酶（trehalose-6-phosphate synthase ，TPS）的作用下，催化尿苷二磷酸葡萄糖（UDPG）和 6-磷酸葡萄糖反應生成中間產物6-磷酸海藻糖， 再在海藻糖-6-磷酸磷酸酶 （trehalose6-phosphatephosphatase ，TPP）的作用下去磷酸化，生成海藻糖。因此，測定TPS活性對于研究植物逆境具有重要意義。
測定原理：TPS 催化 UDPG 與 G6P 生成海藻糖-6-磷酸，同時產生 UDP；UDP 在丙酮酸激酶與乳 酸脫氫酶作用下， 氧化 NADH 為NAD+，NADH 的下降速率與 UDP 含量成正比， 通過 340nm吸光度下降速率反映 TPS 活性。
需自備的儀器和用品：酶標儀、水浴鍋、可調式移液器、 96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制：
提取液：液體 100mL×1 瓶， 4℃保存；
試劑一： 粉劑×1 瓶， -20℃保存； 臨用前加入 12mL 試劑五溶解，用不完的試劑分裝后-20℃ 保存，禁止反復凍融；
試劑二： 粉劑×2 瓶， -20℃保存； 臨用前每瓶加入 10mL 試劑五溶解，現配現用；
試劑三： 粉劑×1 瓶， -20℃避光保存； 臨用前加入 0.1mL 試劑五溶解，用不完的試劑分裝后 -20℃保存，禁止反復凍融；
試劑四： 100μL×1 瓶， 4℃避光保存； 臨用前低速離心， 以防止試劑沾在管壁；
試劑五：液體 50mL×1 瓶，4℃保存；
工作液的配制： 臨用前， 先配置好試劑二和試劑三， 然后取試劑二一瓶， 加入 10μL 試劑三 和 10μL 試劑四， 充分混勻，現配現用。樣品測定的準備：
1、細菌或細胞的處理：收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量 （104 個）： 提取液體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取液）， 超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3S，間隔 10S，重復 30 次） ；8000g ，4℃離心 10min，取上清， 置冰上待測。
2、組織的處理：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1mL 提取液） ，冰浴中勻漿。 8000g ，4℃離心 10min，取上清， 置冰上待測。
測定步驟
測定步驟
1 、在 EP 管中加入如下試劑
試劑名稱（μL）測定管樣本100試劑一100
混勻， 30℃反應 20min ，95℃水浴 2min 滅活， 冷卻至室溫。 10000g 4℃離心 5min，取上層 反應液待測。
試劑名稱（μL）測定管樣本100試劑一100
混勻， 30℃反應 20min ，95℃水浴 2min 滅活， 冷卻至室溫。 10000g 4℃離心 5min，取上層 反應液待測。
2、工作液配制：詳見試劑的組成和配制中工作液的配制。3、在 96 孔板中加入如下試劑
反應液20工作液180
混勻，測定 340nm 下反應 5min 后的吸光值 A1 與 10min 后的吸光值 A2 ，ΔA=A1-A2。
反應液20工作液180
混勻，測定 340nm 下反應 5min 后的吸光值 A1 與 10min 后的吸光值 A2 ，ΔA=A1-A2。
TPS 活力計算：
1、按照蛋白濃度計算
單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘催化 1nmol NADH 定義為一個酶活力單位。
TPS 活力(nmol/min/mg prot)=ΔA×V 反總÷（ ε×d）×109÷（V 樣×Cpr）÷T×10
=1286×ΔA ÷Cpr
2、按樣本鮮重計算
單位的定義：每 g 組織每分鐘催化 1nmol NADH 定義為一個酶活力單位。
TPS 活力(nmol/min/g 鮮重)=ΔA×V 反總÷（ε×d）×109÷（W× V 樣÷V 樣總） ÷T×10
=1286×ΔA÷W
3、按細菌或細胞密度計算
單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘催化 1nmol NADH 定義為一個酶活力單位。 TPS 活力(nmol/min/104 cell)=ΔA×V 反總÷（ε×d）×109÷（V 樣×細胞數量） ÷T×10
=2.57×ΔA
V 反總：反應體系總體積， 0.2mL；ε：NADH 摩爾消光系數， 6.22×103 L / mol /cm；d：96 孔板光徑， 0.5cm；V 樣：加入樣本體積， 0.1 mL；V 樣總： 加入提取液體積， 1 mL；T： 反應時間， 5 min；10，稀釋倍數； Cpr：樣本蛋白質濃度， mg/mL；W：樣本質量；細胞數 量， 500 萬。
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