注 意：正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
NADPase主要存在于植物組織中，是生物體內唯一催化NADP+降解為NAD+的酶，與NADK一起調控NAD和NADP之間的平衡。
測定原理：
NADPase能夠催化NADP+水解為NAD+和無機磷的反應，通過測定無機磷的量來測定NADPase活性。
所需的儀器和用品：
可見分光光度計、恒溫水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1 mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水
試劑的組成和配制：
提取液：60mL×1瓶，4℃保存。
試劑一：液體30 mL×1瓶， 4℃保存。
試劑二：粉劑×5支，-20℃保存；用時每支加入1 mL試劑一充分溶解備用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。
試劑三：粉劑×1 瓶, 4℃保存。用時加入25mL蒸餾水，溶解后4℃可保存一周。
試劑四：粉劑×1瓶, 4℃保存。用時加入25mL蒸餾水，溶解后4℃可保存一周。
試劑五：液體 25mL×1 瓶，室溫保存。
試劑六：10mmol/L 標準磷貯備液 10mL×1 瓶，4℃保存。
0.5μmol/mL 標準磷應用液配制：將試劑六20倍稀釋，即取 0.5mL試劑六加9.5蒸餾水，充分混勻。
定磷試劑的配制：按H2O: 試劑三:試劑四:試劑五=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷試劑
應為淺黃色，若無色則試劑失效，若是藍色則為磷污染，定磷劑現用現配。
注 意：配試劑最好用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器，也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。
樣本的前處理：
按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
操作步驟：
1、酶促反應
| 試劑名稱（μL） | 測定管 | 對照管 |
| 試劑一 | 300 | 300 |
| 試劑二 | 100 | 100 |
37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）預熱5min
| 樣本 | 100 |
|
| 蒸餾水 |
| 100 |
37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）準確反應30min后，95℃水浴5min（蓋緊，以防止水分散失），冷卻后，10000g 25℃離心5min，取上清
2、定磷
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| 標準管 | 空白管 | 測定管 | 對照管 |
| 0.5μmol/ml標準磷應用液 | 100 |
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| 蒸餾水 |
| 100 |
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| 上清液 |
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| 100 | 100 |
| 定磷試劑 | 1000 | 1000 | 1000 | 1000 |
混勻，37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴30min，冷卻至室溫，在 660nm處，蒸餾水調零，記錄各管吸光值。
注意事項：
1、此法具有微量、靈敏、快速的特點。所以對測定所用試管要求嚴格，要沒有一點磷，若試管放過磷酸或磷酸鹽緩沖液，一定要洗得非常干凈，要先用洗潔精加水煮，再用自來水沖，最后用蒸餾水沖干凈。最好用一次性塑料管或新玻璃管，避免磷污染是檢測成敗的關鍵。
2、標準管、空白管和對照管只要做一次即可。
NADPase酶活性計算：
1、按組織蛋白濃度計算：
定義：每小時每毫克組織蛋白NADPase分解NADP 產生1μmol無機磷的量為一個 NADPase活力單位。
NADPase (μmol/h/mg prot)=(C標準管×V總)×(A測定管-A對照管)÷(A標準管-A空白管)÷
(V樣×Cpr)÷T=5×(A測定管-A對照管)÷(A標準管-A空白管)÷Cpr
2、按樣本鮮重計算：
定義：每小時每g組織NADPase分解NADP 產生1μmol無機磷的量為一個 NADPase活力單位。
NADPase (μmol/h/g鮮重)=(C標準管×V總)×(A測定管-A對照管)÷(A標準管-A空白管）×
V總÷(W× V樣÷V樣總)÷T=5×(A測定管-A對照管)÷(A標準管-A空白管)÷W
C標準管：標準管濃度，0.5μmol/mL；V總：酶促反應總體積，0.5mL；V樣：加入樣本體積，0.1mL ；V樣總：加入提取液體積，1mL；T：反應時間，0.5小時；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本鮮重，g。
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