注 意：正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義：
蛋白質羰基是多種氨基酸在蛋白質的氧化修飾過程中的早期標志，其含量高低表明蛋白質氧化損傷程度的大小，是衡量蛋白質氧化損傷的主要指標。
測定原理：
羰基與2,4-二硝基苯肼反應生成紅色2,4-二硝基苯腙，在370nm處有特征吸收峰。
自備實驗用品及儀器：
天平、恒溫水浴鍋、低溫離心機、漩渦震蕩儀、可見分光光度計、1 mL玻璃比色皿和蒸餾水，無水乙醇，乙酸乙酯。
試劑組成和配制：
提取液：液體50mL×1瓶，4℃保存。
試劑一：粉劑0.1g×5支，4℃避光保存。（使用前根據樣品數，每支加1mL水溶解，每支為10個樣品用量）
試劑二：液體20mL×1瓶，4℃避光保存。
試劑三：液體20mL×1瓶，4℃保存。
試劑四：液體25mL×1瓶，4℃保存。
試劑五：根據測定樣品量，將乙酸乙酯和無水乙醇等體積混合。
試劑六：液體100mL×1瓶，4℃保存。
樣品處理：
1. 組織樣品：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液）進行冰浴勻漿，于4℃，4000g離心10min，取上清，加入0.1mL試劑一，室溫放置10min，4℃，10000g離心10min，取上清待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1mL提取液），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；然后10000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。
3. 血清等液體樣本：直接測定。
測定步驟和操作表：
|
| 對照管 | 測定管 |
| 樣品（mL） | 0.2 | 0.2 |
| 試劑二（mL） |
| 0.4 |
| 試劑三（mL） | 0.4 |
|
| 混勻，37℃避光反應1h | ||
| 試劑四（mL） | 0.5 | 0.5 |
| 靜置5min，4℃，12000g離心15min，棄上清，留沉淀 | ||
| 試劑五（mL） | 1.0 | 1.0 |
| 漩渦混勻，4℃，12000g離心10min，棄上清，留沉淀 | ||
| 試劑五（mL） | 1.0 | 1.0 |
| 漩渦混勻，4℃，12000g離心10min，棄上清，留沉淀 | ||
| 試劑五（mL） | 1.0 | 1.0 |
| 漩渦混勻，4℃，12000g離心10min，棄上清，留沉淀 | ||
| 試劑六（mL） | 1.0 | 1.0 |
| 漩渦混勻，37℃溫育15min，沉淀全部溶解后，4℃，12000g離心15min，取上清，1mL玻璃比色皿，試劑六調零，分別記錄370nm對照管和測定管在的吸光值，ΔA370 =A370測定管－A370對照管 | ||
計算公式：
1. 按照樣本蛋白濃度計算
蛋白質羰基含量（μmol/mg prot）= [ΔA370×V反總÷（ε×d）]÷(V樣×Cpr) =0.227×ΔA370÷Cpr
2. 按照樣本重量計算
蛋白質羰基含量（μmol/g 鮮重）= [ΔA370×V反總÷（ε×d）]÷(W ×V樣÷V樣總) =0.227×ΔA370÷W
3. 按照細胞數量計算
蛋白質羰基含量（μmol/104cell）= [ΔA370×V反總÷（ε×d）]÷(細胞數量 ×V樣÷V樣總) =0.227×ΔA370÷細胞數量
4. 按照液體體積計算
蛋白質羰基含量（μmol/mL）= [ΔA370×V反總÷（ε×d）]÷V樣=0.227×ΔA370
V反總：反應體系總體積，1mL；ε：羰基微摩爾消光系數，22×10-3 L/μmol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.2 mL；V樣總：加入提取液體積，1 mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL，W：樣本質量，g
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