注 意：正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
PPO（EC1.10.3.1）主要存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，是一種含銅的氧化酶，能使一元酚和二元酚氧化產生醌，從而引起褐化，與果蔬加工、茶葉品質和組培等密切相關。
測定原理：
PPO能夠催化鄰苯二酚產生醌，后者在525nm有特征光吸收。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
試劑組成和配制：
提取液：液體，60mL×1瓶，4℃保存；
試劑一：液體，40mL×1瓶，4℃保存；
試劑二：液體，10mL×1瓶，4℃保存；
粗酶液提取：
1、細菌、細胞或組織樣品的制備：
細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2、血清（漿）或果汁樣本的處理：
按照血清（漿）或果汁體積（mL）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議取0.1mL血清（漿）或果汁加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
測定步驟：
1、 分光光度計預熱30min以上，調節波長至525nm，蒸餾水調零。
2、 樣本測定（在EP管中依次加入下列試劑）
| 試劑名稱（μL） | 測定管 | 對照管 |
| 樣本 | 180 |
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| 煮沸的樣本 |
| 180 |
| 試劑一 | 720 | 720 |
| 試劑二 | 180 |
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| 蒸餾水 |
| 180 |
37℃(哺乳動物)或25℃（其它物種）中準確水浴10min后，95℃水浴5min
充分混勻，10000g，25℃離心10min，取上清，525nm處檢測測定管和對照管吸光度。ΔA=A測定管-A對照管。
注意：煮沸樣本的操作：取300μL離心上清于EP管中，進行5min 95℃水浴處理；每個測定管需要設一個對照管，可以在不同對照管中加入不同樣品的粗酶液，然后集中進行5min 95℃水浴處理。
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