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Stbl4 Electroporation-Competent Cell50μl/支￥ 1080100 個
Stbl4 50μl/支
pUC19 (control vector，10pg/μl): 10μl
基因型
F′ proAB+ lacIqZ∆M15 Tn10 (TetR)mcrA ∆(mcrBC-hsdRMS-mrr) recA1 endA1 gyrA96 gal- thi-1 supE44 λ- relA1∆(lac-proAB)
Stbl4 Electroporation-Competent Cell
產品說明
Stbl4菌株來源于 Stbl2 E. coli strain，可用于慢病毒載體或逆轉錄病毒載體的構建。Stbl4菌株適合克隆不穩定插入片段 (正向重復序列，逆轉錄病毒序列等)；mcrA突變和mcrBC-hsd RMS-mrr deletion 使該菌株更適于克隆甲基化的基因組序列。recA 1和endA1的突變有利于克隆DNA的穩定和高純度質粒DNA的提取。lacIqZΔM15標記使得Stbl4菌株可用于藍、白斑篩選，此菌株具有四環素抗性。生產的Stbl4電擊感受態細胞經特殊工藝制作，pUC19質粒檢測轉化效率可達0.5×1010 cfu/μg DNA，特別適合于慢病毒質粒文庫或逆轉錄質粒文庫的構建。
操作方法
1. 0.1 cm 電擊杯和杯蓋從儲存液中拿出倒置于干凈的吸水紙上5分鐘，待其瀝干水分，正置5分鐘，待乙醇揮發干凈立即插入冰中，壓實冰面，電擊杯頂離冰面0.5 cm以方便蓋上杯蓋，冰中靜置5分鐘充分降溫。
2. 取-80℃保存的Stbl4電擊感受態細胞插入冰中5 分鐘，待其融化，加入目的DNA (質粒或連接產物)并用手打EP管底輕輕混勻，避免產生氣泡，立即插入冰中。
A. 測定轉化效率使用1 μl 10 pg/μl的對照質粒 pUC19；
B. 對于連接產物，大部分公司的T4連接酶反應體系或50度反應重組體系可與Stbl4電擊感受態混合后電擊轉化，無需 進行DNA純化，但DNA濃度不能過高，DNA濃度不超過100 ng/μl，體積不超過5 μl/50 μl感受態。
C. 對鹽濃度較高的DNA溶液或反應體系請用乙醇沉淀DNA后加入適量TE緩沖液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM EDTA)重懸，然后與Stbl4電擊感受態混合進行電擊轉化。
3. 用200 μl槍頭(用刀切除0.5cm槍尖)將感受態-DNA混合物快速移到電擊杯中，避免產生氣泡，蓋上杯蓋。
4. 啟動電轉儀，設置參數：C=25 μF，PC=200 Ω，V=1.8 kV (此為BioRad 電轉儀推薦參數，也可按所用電轉儀推薦的參數操作），將電擊杯快速放入電轉槽中，電擊完成快速插入冰中。
5. 2分鐘后從冰中取出電擊杯，放室溫，加入700 μl不含抗生素的無菌S.O.C. 培養基（室溫），用1ml 槍吹吸電擊杯底部數次混勻后，轉移到50 ml離心管（BD Falcon 50 ml錐形離心管等），向離心管中補加S.O.C. 培養基至10 ml。30℃，225 rpm復蘇90分鐘。當質粒中含有不穩定片段時，30℃培養可降低錯誤重組的概率，若轉化control pUC19計算轉化效率，則需37℃，225 rpm復蘇60分鐘
6. 5000 rpm離心一分鐘收菌，重懸后取100-200 μl涂布到含相應抗生素的LB平板上（因菌量較大，若全部涂板請選用直徑15cm培養皿2-5個）。將平板倒置放于37℃培養箱過夜培養17-20小時或30℃培養箱過夜培養20-24小時。若轉化control pUC19計算轉化效率，則需37℃培養過夜。
7.若要獲得大量，高純度質粒，建議在TB培養基中30度搖菌培養（以標準質粒PUC19為例：500ml三角瓶中加入100ml TB營養液，經30度250rpm搖菌，可提取約100-200ug PUC19質粒）
試驗前請仔細閱讀說明書，本產品僅供科研實驗使用。
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